К вопросу о диагностике меланоцитарных новообразований (обзор литературы)

Обложка
  • Авторы: Олисова О.Ю.1, Притуло О.А.2, Кирилюк Т.И.1
  • Учреждения:
    1. ФГАОУ ВО «Первый Московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова» Минздрава России (Сеченовский Университет)
    2. Медицинская академия имени С.И. Георгиевского ФГАОУ ВО «Крымский федеральный университет имени В.И. Вернадского»
  • Выпуск: Том 23, № 5 (2020)
  • Страницы: 278-287
  • Раздел: ДЕРМАТООНКОЛОГИЯ
  • Статья получена: 01.11.2020
  • Статья опубликована: 15.10.2020
  • URL: https://rjsvd.com/1560-9588/article/view/48837
  • DOI: https://doi.org/10.17816/dv48837
  • ID: 48837


Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Доступ платный или только для подписчиков

Аннотация

Представлен анализ зарубежных источников литературы, описывающих возможности применения различных методов диагностики и их сочетания с аналитическим программным обеспечением, искусственным интеллектом для диагностики доброкачественных и злокачественных меланоцитарных новообразований кожи; проведена оценка их эффективности, описаны недостатки методов по результатам зарубежных исследований последних лет.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

Ольга Юрьевна Олисова

ФГАОУ ВО «Первый Московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова» Минздрава России (Сеченовский Университет)

Автор, ответственный за переписку.
Email: Olisovaolga@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-2482-1754

доктор медицинских наук, профессор, заведующая кафедрой кожных и венерических болезней имени В.А. Рахманова Института клинической медицины

Россия, Москва

О. А. Притуло

Медицинская академия имени С.И. Георгиевского ФГАОУ ВО «Крымский федеральный университет имени В.И. Вернадского»

Email: Olisovaolga@mail.ru
ORCID iD: 0000-0001-6515-1924
Россия, Симферополь

Т. И. Кирилюк

ФГАОУ ВО «Первый Московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова» Минздрава России (Сеченовский Университет)

Email: Olisovaolga@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-2720-9942
Россия, Москва

Список литературы

  1. Zalaudek I., Manzo M., Savarese I., Docimo G., Ferrara G., Argenziano G. The morphologic universe of melanocytic nevi. Semin Cutan Med Surg. 2009;28(3):149-56.
  2. Huang J.M., Chikeka I., Hornyak T.J. Melanocytic nevi and the genetic and epigenetic control of oncogene-induced senescence. Dermatol Clin. 2017;35(1):85-93. doi: 10.1016/j.det.2016.08.00.
  3. Levy R., Lara-Corrales I. Melanocytic nevi in children: A review. Pediatr Ann. 2016;45(8):e293-8. doi: 10.3928/19382359-20160720-07.
  4. Олисова О.Ю., Андреева Е.В. Еще раз о проблеме гиперпигментации // Российский журнал кожных и венерических болезней. 2014;17(2):20-4.
  5. Олисова О.Ю., Владимирова Е.В., Бабушкин А.М. Кожа и солнце // Российский журнал кожных и венерических болезней. 2012;15(6):57-62.
  6. Pampena R., Kyrgidis A., Lallas A., Moscarella E., Argenziano G., Longo C. A meta-analysis of nevus-associated melanoma: Prevalence and practical implications. J Am Acad Dermatol. 2017;77(5):938-45.e4. doi: 10.1016/j.jaad.2017.06.149.
  7. Sheen Y.S., Liao Y.H., Lin M.H., Chen J.S., Liau J.Y., Liang C.W., et al. Clinicopathological features and prognosis of patients with de novo versus nevus-associated melanoma in Taiwan. PLoS One. 2017;12(5):e0177126.
  8. Shain A.H., Bastian B.C. From melanocytes to melanomas. Nat Rev Cancer. 2016;16(6):345-58. doi: 10.1038/nrc.2016.37.
  9. Wolner Z.J., Yelamos O., Liopyris K., Rogers T., Marchetti M.A., Marghoob A.A. Enhancing skin cancer diagnosis with dermoscopy. Dermatol Clin. 2017;35(4):417-37. doi: 10.1016/j.det.2017.06.003.
  10. Piccolo D., Ferrari A., Peris K., Diadone R., Ruggeri B., Chimenti S. Dermoscopic diagnosis by a trained clinician vs. a clinician with minimal dermoscopy training vs. computer-aided diagnosis of 341 pigmented skin lesions: a comparative study. Br J Dermatol. 2002;147(3):481-6.
  11. Weber P., Tschandl P., Sinz C., Kittler H. Dermatoscopy of neoplastic skin lesions: recent advances, updates, and revisions. Curr Treat Options Oncol. 2018;19(11):56. doi: 10.1007/s11864-018-0573-6.
  12. Dolianitis C., Kelly J., Wolfe R., Simpson P. Comparative performance of 4 dermoscopic algorithms by nonexperts for the diagnosis of melanocytic lesions. Arch Dermatol. 2005;141(8):1008-14.
  13. Carrera C., Marchetti M.A., Dusza S.W., Argenziano G., Braun R.P., Halpern A.C., et al. Validity and reliability of dermoscopic criteria used to differentiate nevi from melanoma: A web-based International Dermoscopy Society Study. JAMA Dermatol. 2016;152(7):798-806. doi: 10.1001/jamadermatol.2016.0624.
  14. Rigel D.S., Friedman R.J. The rationale of the ABCDs of early melanoma. J Am Acad Dermatol. 1993;29(6):1060-1. doi: 10.1016/s0190-9622(08)82059-2.
  15. Thomas L., Tranchand P., Berard F., Secchi T., Colin C., Moulin G. Semiological value of ABCDE criteria in the diagnosis of cutaneous pigmented tumors. Dermatology. 1998;197(1):11-7. doi: 10.1159/000017969.
  16. Chamberlain A.J., Fritschi L., Kelly J.W. Nodular melanoma: patients’ perceptions of presenting features and implications for earlier detection. J Am Acad Dermatol. 2003;48(5):694-701. doi: 10.1067/mjd.2003.216.
  17. Menzies S.W., Ingvar C., Crotty K.A., McCarthy W.H. Frequency and morphologic characteristics of invasive melanomas lacking specific surface microscopic features. Arch Dermatol. 1996;132(10):1178-82.
  18. Henning J.S., Dusza S.W., Wang S.Q., Marghoob A.A., Rabinovitz H.S., Polsky D., Kopf A.W. The CASH (color, architecture, symmetry, and homogeneity) algorithm for dermoscopy. J Am Acad Dermatol. 2007;56(1):45-52. doi: 10.1016/j.jaad.2006.09.003.
  19. Unlu E., Akay B.N., Erdem C. Comparison of dermatoscopic diagnostic algorithms based on calculation: The ABCD rule of dermatoscopy, the seven-point checklist, the three-point checklist and the CASH algorithm in dermatoscopic evaluation of melanocytic lesions. J Dermatol. 2014;41(7):598-603. doi: 10.1111/1346-8138.12491.
  20. Argenziano G., Fabbrocini G., Carli P., De Giorgi V., Sammarco E., Delfino M. Epiluminescence microscopy for the diagnosis of doubtful melanocytic skin lesions. Comparison of the ABCD rule of dermatoscopy and a new 7-point checklist based on pattern analysis. Arch Dermatol. 1998;134(12):1563-70. doi: 10.1001/archderm.134.12.1563.
  21. Haenssle H.A., Krueger U., Vente C., Thoms K.M., Bertsch H.P., Zutt M., et al. Results from an observational trial: digital epiluminescence microscopy follow-up of atypical nevi increases the sensitivity and the chance of success of conventional dermoscopy in detecting melanoma. J Invest Dermatol. 2006;126(5):980-5.
  22. Argenziano G., Mordente I., Ferrara G., Sgambato A., Annese P., Zalaudek I. Dermoscopic monitoring of melanocytic skin lesions: clinical outcome and patient compliance vary according to follow-up protocols. Br J Dermatol. 2008;159(2):331-6.
  23. Skvara H., Teban L., Fiebiger M., Binder M., Kittler H. Limitations of dermoscopy in the recognition of melanoma. Arch Dermatol. 2005;141(2):155-60.
  24. Deinlein T., Michor C., Hofmann-Wellenhof R., Schmid-Zalaudek K., Fink-Puches R. The importance of total-body photography and sequential digital dermatoscopy for monitoring patients at increased melanoma risk. J Dtsch Dermatol Ges. 2020;18(7):692-7. doi: 10.1111/ddg.14158.
  25. Salerni G., Carrera C., Lovatto L., Marti-Laborda R.M., Isern G., Palou J., et al. Characterization of 1152 lesions excised over 10 years using total-body photography and digital dermatoscopy in the surveillance of patients at high risk for melanoma. J Am Acad Dermatol. 2012;67(5):836-45.
  26. March J., Hand M., Grossman D. Practical application of new technologies for melanoma diagnosis: Part I. Noninvasive approaches. J Am Acad Dermatol. 2015;72(6):929-41. doi: 10.1016/j.jaad.2015.02.1138.
  27. Shrivastava V., Bailin P., Elliott J., Bacnik E., Gastman B., Bergfeld W., et al. Histopathologic correlation of high-risk MelaFindTM lesions: a 3-year experience from a high-risk pigmented lesion clinic. Int J Dermatol. 2019;58(5):569-76. doi: 10.1111/ijd.14336.
  28. Emery J.D., Hunter J., Hall P.N., Watson A.J., Moncrieff M., Walter F.M. Accuracy of SIAscopy for pigmented skin lesions encountered in primary care: development and validation of a new diagnostic algorithm. BMC Dermatol. 2010;10:9. doi: 10.1186/1471-5945-10-9.
  29. Sgouros D., Lallas A., Julian Y., Rigopoulos D., Zalaudek I., Longo C., et al. Assessment of SIAscopy in the triage of suspicious skin tumours. Skin Res Technol. 2014;20(4):440-4. doi: 10.1111/srt.12138.
  30. Hartmann D., Krammer S., Ruini C., Ruzicka T., von Braunmuhl T. Correlation of histological and ex-vivo confocal tumor thickness in malignant melanoma. Lasers Med Sci. 2016;31(5):921-7. doi: 10.1007/s10103-016-1936-5.
  31. Alarcon I., Carrera C., Puig S., Malvehy J. Utilidad clínica de la microscopia confocal de reflectancia en el manejo del lentigo maligno melanoma. Actas Dermosifiliogr. 2014;105:e13-7.
  32. Shu X., Beckmann L., Zhang H. Visible-light optical coherence tomography: a review. J Biomed Opt. 2017;22(12):1-14. doi: 10.1117/1.JBO.22.12.121707.
  33. Sattler E., Kastle R., Welzel J. Optical coherence tomography in dermatology. J Biomed Opt. 2013;18(6):061224.
  34. Aberg P., Nicander I., Hansson J., Geladi P., Holmgren U., Ollmar S. Skin cancer identification using multifrequency electrical impedance–a potential screening tool. IEEE Trans Biomed Eng. 2004;51(12):2097-102.
  35. Ferris L.K., Gerami P., Skelsey M.K., Peck G., Hren C., Gorman C., et al. Real-world performance and utility of a noninvasive gene expression assay to evaluate melanoma risk in pigmented lesions. Melanoma Res. 2018;28(5):478-82. doi: 10.1097/CMR.0000000000000478.
  36. Schmalzlin E., Moralejo B., Gersonde I., Schleusener J., Darvin M.E., Thiede G., Roth M.M. Nonscanning large-area Raman imaging for ex vivo/in vivo skin cancer discrimination. J Biomed Opt. 2018;23(10):1-11. doi: 10.1117/1.JBO.23.10.105001.
  37. Feng X., Moy A.J., Nguyen H.T.M., Zhang Y., Zhang J., Fox M.C., et al. Raman biophysical markers in skin cancer diagnosis. J Biomed Opt. 2018;23(5):1-10. doi: 10.1117/1.JBO.23.5.057002.
  38. Shain A.H., Bastian B.C. From melanocytes to melanomas. Nat Rev Cancer. 2016;16(6):345-58. doi: 10.1038/nrc.2016.37.
  39. Weinstock M.A., Lott J.P., Wang Q., Titus L.J., Onega T., Nelson H.D., et al. Skin biopsy utilization and melanoma incidence among Medicare beneficiaries. Br J Dermatol. 2017;176(4):949-54. doi: 10.1111/bjd.15077.
  40. de Menezes S.L., Wolfe R., Kelly J.W., Farrugia H., Mar V.J. Think before you shave: Factors influencing choice of biopsy technique for invasive melanoma and effect on definitive management. Australas J Dermatol. 2020;61(2):134-9. doi: 10.1111/ajd.13227.
  41. Shellenberger R.A., Fayyaz F., Sako Z., Schaeffer M., Tawagi K., Scheidel C., Nabhan M. Impact of biopsy technique on clinically important outcomes for cutaneous melanoma: A systematic review and meta-analysis. Mayo Clin Proc Innov Qual Outcomes. 2020;4(4):373-83. doi: 10.1016/j.mayocpiqo.2020.04.005.
  42. Farberg A.S., Rigel D.S. A comparison of current practice patterns of US dermatologists versus published guidelines for the biopsy, initial management, and follow up of patients with primary cutaneous melanoma. J Am Acad Dermatol. 2016;75(6):1193-7.e1. doi: 10.1016/j.jaad.2016.07.051.
  43. de Menezes S.L., Kelly J.W., Wolfe R., Farrugia H., Mar V.J. The increasing use of shave biopsy for diagnosing invasive melanoma in Australia. Med J Aust. 2019;211(5):213-8. doi: 10.5694/mja2.50289.
  44. Pavri S.N., Clune J., Ariyan S., Narayan D. Malignant melanoma: beyond the basics. Plast Reconstr Surg. 2016;138(2):e330-40. doi: 10.1097/PRS.0000000000002367.
  45. Zuluaga-Sepulveda M.A., Arellano-Mendoza I., Ocampo-Candiani J. Update on surgical treatment of primary and metastatic cutaneous melanoma. Cir Cir. 2016;84(1):77-84. doi: 10.1016/j.circir.2015.06.020.
  46. Kinsler V.A., O’Hare P., Bulstrode N., Calonje J.E., Chong W.K., Hargrave D., et al. Melanoma in congenital melanocytic naevi. Br J Dermatol. 2017;176(5):1131-43. doi: 10.1111/bjd.15301.
  47. Riverso M., Montagnani V., Stecca B. KLF4 is regulated by RAS/RAF/MEK/ERK signaling through E2F1 and promotes melanoma cell growth. Oncogene. 2017;36(23):3322-33. doi: 10.1038/onc.2016.481.
  48. Malicherova B., Burjanivova T., Minarikova E., Kasubova I., Pecova T., Bobrovska M., et al. Detection of driver mutations in FFPE samples from patients with verified malignant melanoma. Neoplasma. 2019;66(1):33-8. doi: 10.4149/neo_2018_180115N31.
  49. Xia J., Jia P., Hutchinson K.E., Dahlman K.B., Johnson D., Sosman J., et al. A meta-analysis of somatic mutations from next generation sequencing of 241 melanomas: a road map for the study of genes with potential clinical relevance. Mol Cancer Ther. 2014;13(7):1918-28. doi: 10.1158/1535-7163.MCT-13-0804.
  50. Gershenwald J.E., Scolyer R.A., Hess K.R., Sondak V.K., Long G.V., Ross M.I., et al.; for members of the American Joint Committee on Cancer Melanoma Expert Panel and the International Melanoma Database and Discovery Platform. Melanoma staging: Evidence-based changes in the American Joint Committee on Cancer eighth edition cancer staging manual. CA Cancer J Clin. 2017;67(6):472-92. doi: 10.3322/caac.21409.
  51. Nosrati A., Tsai K.K., Goldinger S.M., Tumeh P., Grimes B., Loo K., et al. Evaluation of clinicopathological factors in PD-1 response: derivation and validation of a prediction scale for response to PD-1 monotherapy. Br J Cancer. 2017;116(9):1141-7. doi: 10.1038/bjc.2017.70.
  52. Wevers K.P., Kruijff S., Speijers M.J., Bastiaannet E., Muller Kobold A.C., Hoekstra H.J. S-100B: a stronger prognostic biomarker than LDH in stage IIIB-C melanoma. Ann Surg Oncol. 2013;20(8):2772-9. doi: 10.1245/s10434-013-2949-y.
  53. Deckers E.A., Kruijff S., Brouwers A.H., van der Steen K., Hoekstra H.J., Thompson J.F., et al. The association between active tumor volume, total lesion glycolysis and levels of S-100B and LDH in stage IV melanoma patients. Eur J Surg Oncol. 2020:S0748-7983(20)30637-5. doi: 10.1016/j.ejso.2020.07.011.
  54. Mumford S.L., Towler B.P., Pashler A.L., Gilleard O., Martin Y., Newbury S.F. Circulating MicroRNA biomarkers in melanoma: tools and challenges in personalised medicine. Biomolecules. 2018;8(2):21. doi: 10.3390/biom8020021.
  55. Швецова Ю.И., Палкина Н.В., Аксененко М.Б., Рукша Т.Г. Изменения экспрессии микроРНК при меланоцитарных новообразованиях кожи // Российский журнал кожных и венерических болезней. 2015;18(3):6-9.
  56. Haenssle H.A., Fink C., Schneiderbauer R., Toberer F., Buhl T., Blum A., et al. Man against machine: diagnostic performance of a deep learning convolutional neural network for dermoscopic melanoma recognition in comparison to 58 dermatologists. Ann Oncol. 2018;29(8):1836-42.
  57. Sondermann W., Utikal J.S., Enk A.H., Schadendorf D., Klode J., Hauschild A., et al. Prediction of melanoma evolution in melanocytic nevi via artificial intelligence: A call for prospective data. Eur J Cancer. 2019;119:30-4. doi: 10.1016/j.ejca.2019.07.009.
  58. Elmore J.G., Barnhill R.L., Elder D.E., Longton G.M., Pepe M.S., Reisch L.M., et al. Pathologists diagnosis of invasive melanoma and melanocytic proliferations: observer accuracy and reproducibility study. BMJ. 2017;357:j2813. doi: 10.1136/bmj.j2813.
  59. Brinker T.J., Hekler A., Enk A.H., Berking C., Haferkamp S., Hauschild A., et al. Deep neural networks are superior to dermatologists in melanoma image classification. Eur J Cancer. 2019;119:11-7. doi: 10.1016/j.ejca.2019.05.023.
  60. Сергеев Ю.Ю., Олисова О.Ю. Анализ обращаемости на дерматоскопический осмотр // Российский журнал кожных и венерических болезней. 2016;19(2):107.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

© ООО "Эко-Вектор", 2020


СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия ПИ № ФС 77 - 86501 от 11.12.2023 г. 
СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия ЭЛ № ФС 77 - 80653 от 15.03.2021 г.


Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах