Диагностическая значимость оценки уровня экспрессии микроРНК при аутоиммунной пузырчатке
- Авторы: Теплюк Н.П.1, Шимановский Н.Л.2, Федотчева Т.А.2, Мак Д.В.1, Колесова Ю.В.1, Лепехова А.А.1, Ульченко Д.Н.2
-
Учреждения:
- Первый Московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова (Сеченовский Университет)
- Российский национальный исследовательский медицинский университет имени Н.И. Пирогова
- Страницы: 200-211
- Раздел: ДЕРМАТОЛОГИЯ
- Статья получена: 05.12.2024
- Статья одобрена: 21.03.2025
- Статья опубликована: 24.05.2025
- URL: https://rjsvd.com/1560-9588/article/view/642566
- DOI: https://doi.org/10.17816/dv642566
- ID: 642566
Цитировать
Полный текст



Аннотация
Обоснование: Аутоиммунная пузырчатка (АП) - группа жизнеугрожающих, прогрессирующих дерматозов, требующих своевременной и точной диагностики для проведения эффективной терапии. Существующие методы диагностики нередко остаются недоступными для врачей и пациентов, а также могу давать ложноположительные и ложноотрицательные результаты. Перспективным направлением исследований является изучение микроРНК (miR-338-3p и miR-424-5p), которые связаны с ключевыми патогенетическими процессами, включая регуляцию апоптоза, дисбаланс Т-клеточного ответа и активацию аутоиммунных реакций.
Цель: Сравнить уровни экспрессии miR-338-3p и miR-424-5p у пациентов с АП в активной стадии и ремиссии, а также у участников групп здорового контроля и пациентов с другими буллезными дерматозами. Оценить их диагностическую значимость и связь с тяжестью заболевания.
Методы: Проспективное сравнительное исследование. В исследование включены 20 пациентов с АП в активной стадии, 15 - в стадии ремиссии, 15 участников группы здорового контроля, а также 6 пациентов в активной стадии других буллезных дерматозов. Изучение экспрессии miRNA-338-3p и miR-424-5p проводили с помощью ПЦР-РВ, кДНК получали на основе технологии «StemLoop». Оценка уровней относительной экспрессии основывалась на ее сравнении с экспрессией малой ядерной РНК U6.
Результаты: Уровни экспрессии miR-338-3p и miR-424-5p были значительно выше у пациентов с активной стадией АП по сравнению со всеми другими группами (p < 0,001). В процессе исследования была установлена статистически значимая связь между уровнем экспрессии miR-338-3p с тяжестью заболевания по индексу PDAI (p < 0,001), для miR-424-5p также выявлена положительная, но более слабая корреляция со степенью тяжести. ROC-анализ показал высокую диагностическую точность miR-338-3p (AUC = 0.94) и miR-424-5p (AUC = 0.93) для разграничения пациентов с активной стадией АП и участниками из группы здорового контроля, с чувствительностью и специфичностью 95.0% и 75.0%, 95.0% и 73.3% соответственно. На третьей неделе от начала терапии системными глюкокортикостероидами у пациентов в активной стадии АП уровень miR-338-3p значительно снижался (p = 0,035), тогда как статистически значимого снижения miR-424-5p не наблюдалось.
Заключение: miR-338-3p и miR-424-5p могут служить перспективными биомаркерами для диагностики и оценки тяжести АП, а уровень экспрессии miR-338-3p - для оценки эффективности проводимой патогенетической терапии. Высокая диагностическая точность обеих микроРНК, определенная с помощью ROC-анализа, указывает на возможность их использования в качестве биомаркеров для своевременного выявления заболевания и дифференциальной диагностики с другими буллезными дерматозами.
Ключевые слова
Полный текст

Об авторах
Наталия Павловна Теплюк
Первый Московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова (Сеченовский Университет)
Email: teplyukn@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-5800-4800
SPIN-код: 8013-3256
доктор медицинских наук, профессор
Россия, 119991, Москва, ул. Большая Пироговская, д. 4/1Николай Львович Шимановский
Российский национальный исследовательский медицинский университет имени Н.И. Пирогова
Email: shiman@rsmu.ru
ORCID iD: 0000-0001-8887-4420
SPIN-код: 5232-8230
д-р мед. наук, профессор, чл.-корр. РАН
Россия, Россия, 117997, Москва, ул. Островитянова, д. 1, стр.6Татьяна Александровна Федотчева
Российский национальный исследовательский медицинский университет имени Н.И. Пирогова
Email: tfedotcheva@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-4998-9991
SPIN-код: 1261-5650
доктор медицинских наук, профессор
Россия, Россия, 117997, Москва, ул. Островитянова, д. 1, стр.6Дарья Витальевна Мак
Первый Московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова (Сеченовский Университет)
Автор, ответственный за переписку.
Email: dariamak25@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-7020-0572
SPIN-код: 8204-4555
аспирант
Россия, 119991, Москва, ул. Трубецкая, д. 8, стр. 2Юлия Владимировна Колесова
Первый Московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова (Сеченовский Университет)
Email: kolesovamsmu@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-3617-2555
SPIN-код: 1441-8730
к.м.н., ассистент кафедры
Россия, 119991, Москва, ул. Трубецкая, д. 8, стр. 2Анфиса Александровна Лепехова
Первый Московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова (Сеченовский Университет)
Email: anfisa.lepehova@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-4365-3090
SPIN-код: 3261-3520
кандидат медицинских наук, доцент
Россия, 119991, Москва, ул. Трубецкая, д. 8, стр. 2Дарья Николаевна Ульченко
Российский национальный исследовательский медицинский университет имени Н.И. Пирогова
Email: motci@list.ru
ORCID iD: 0009-0008-1894-5746
SPIN-код: 9735-2364
Россия, Москва
Список литературы
- 1. Олисова О.Ю., Теплюк Н.П. Иллюстрированное руководство по дерматологии для подготовки врачей к аккредитации. Москва: ГЭОТАР-Медиа, 2023.
- 2. Malik AM, Tupchong S, Huang S, Are A, Hsu S, Motaparthi K. An Updated Review of Pemphigus Diseases. Medicina (Kaunas). 2021;57(10):1080. Published 2021 Oct 9. doi: 10.3390/medicina57101080
- 3. Schmidt E, Kasperkiewicz M, Joly P. Pemphigus. Lancet. 2019;394(10201):882-894. doi: 10.1016/S0140-6736(19)31778-7
- 4. Amagai M, Tanikawa A, et al. Committee for Guidelines for the Management of Pemphigus Disease. Japanese guidelines for the management of pemphigus. J Dermatol. 2014;41(6):471-486. doi: 10.1111/1346-8138.12486
- 5. Kridin K. Pemphigus group: Overview, epidemiology, mortality, and comorbidities. Immunol Res. 2018;66(2):255–270. doi: 10.1007/s12026-018-8986-7
- 6. Gonçalves GA, Brito MM, Salathiel AM, Ferraz TS, Alves D, Roselino AM. Incidence of pemphigus vulgaris exceeds that of pemphigus foliaceus in a region where pemphigus foliaceus is endemic: analysis of a 21-year historical series. An Bras Dermatol. 2011;86(6):1109-1112. doi: 10.1590/s0365-05962011000600007
- 7. Costan VV, Popa C, Hâncu MF, Porumb-Andrese E, Toader MP. Comprehensive review on the pathophysiology, clinical variants and management of pemphigus (Review). Exp Ther Med. 2021;22(5):1335. doi: 10.3892/etm.2021.10770
- 8. Harel-Raviv M., Srolovitz H., Gornitsky M. Pemphigus vulgaris: The potential for error. A case report // Spec Care Dentist. 1995. Vol. 15, N 2. Р. 61–64. doi: 10.1111/j.1754-4505.1995.tb00478.x 20.
- 9. Morishima-Koyano M., Nobeyama Y., Fukasawa-Momose M., et al. Case of pemphigus foliaceus misdiagnosed as a single condition of erythrodermic psoriasis and modified by broda- lumab // J Dermatol. 2020. Vol. 47, N 5. Р. e201–e202. doi: 10.1111/1346-8138.15295
- 10. Daltaban Ö., Özçentik A., Karakaş A., et al. Clinical presentation and diagnostic delay in pemphigus vulgaris: A prospective study from Turkey // J Oral Pathol Med. 2020. Vol. 49, N 7. Р. 681–686. doi: 10.1111/jop.13052
- 11. Хамаганова И.В., Маляренко Е.Н., Денисова Е.В., и др. Ошибка в диагностике вульгарной пузырчатки: клинический случай // Российский журнал кожных и венерических болезней. 2017. Т. 20, No 1. С. 30–33. doi: 10.18821/1560-9588-2017-20-1-30-33 21.
- 12. Теплюк Н.П., Колесова Ю.В., Мак Д.В., Лепехова А.А., Тощаков С.В., Федотчева Т.А. Аутоиммунная пузырчатка: новые подходы к диагностике и оценке тяжести заболевания // Российский журнал кожных и венерических болезней. 2023. Т. 26, No 5. С. 515–526. DOI: https://doi.org/10.17816/dv492306
- 13. Kridin K, Bergman R. The Usefulness of Indirect Immunofluorescence in Pemphigus and the Natural History of Patients With Initial False-Positive Results: A Retrospective Cohort Study. Front Med (Lausanne). 2018;5:266. Published 2018 Oct 17. doi: 10.3389/fmed.2018.00266
- 14. Giurdanella F, Nijenhuis AM, Diercks GFH, Jonkman MF, Pas HH. Keratinocyte Binding Assay Identifies Anti-Desmosomal Pemphigus Antibodies Where Other Tests Are Negative. Front Immunol. 2018;9:839. Published 2018 Apr 24. doi: 10.3389/fimmu.2018.00839
- 15. Schmidt E, Dähnrich C, Rosemann A, et al. Novel ELISA systems for antibodies to desmoglein 1 and 3: correlation of disease activity with serum autoantibody levels in individual pemphigus patients. Exp Dermatol. 2010;19(5):458-463. doi: 10.1111/j.1600-0625.2010.01069.x
- 16. O'Brien, J., Hayder, H., Zayed, Y., & Peng, C. (2018). Overview of MicroRNA Biogenesis, Mechanisms of Actions, and Circulation. Frontiers in endocrinology, 9, 402. https://doi.org/10.3389/fendo.2018.00402
- 17. Sanz-Rubio D., Martin-Burriel I., Gil A., Cubero P., Forner M., Khalyfa A., Marin J.M. Stability of circulating exosomal miRNAs in healthy subjects. Scientific Reports. 2018; 8 (1): 10306. doi: 10.1038/s41598-018-28748-5.
- 18. Matias-Garcia P.R., Wilson R., Mussack V., Reischl E., Wald- enberger M., Gieger C., Anton G., Peters A., Kuehn-Steven A. Impact of long-term storage and freeze-thawing on eight circu- lating microRNAs in plasma samples. PLoS One. 2020; 15 (1): e0227648. doi: 10.1371/journal.pone.0227648.
- 19. Ward Gahlawat A., Lenhardt J., Witte T., Keitel D., Kaufhold A., Maass K.K., Pajtler K.W., Sohn C., Schott S. Evaluation of storage tubes for combined analysis of circulating nucleic acids in liquid biopsies. International Journal of Molecular Sciences. 2019; 20 (3): 704. doi: 10.3390/ijms20030704
- 20. Lin, N., Liu, Q., Wang, M., Wang, Q., & Zeng, K. (2018). Usefulness of miRNA-338-3p in the diagnosis of pemphigus and its correlation with disease severity. PeerJ, 6, e5388. https://doi.org/10.7717/peerj.5388
- 21. Wang M, Liang L, Li L, et al. Increased miR-424-5p expression in peripheral blood mononuclear cells from patients with pemphigus. Mol Med Rep. 2017;15(6):3479-3484. doi: 10.3892/mmr.2017.6422
- 22. Rodriguez, M. S., Egaña, I., Lopitz-Otsoa, F., Aillet, F., Lopez-Mato, M. P., Dorronsoro, A., Lobato-Gil, S., Sutherland, J. D., Barrio, R., Trigueros, C., & Lang, V. (2014). The RING ubiquitin E3 RNF114 interacts with A20 and modulates NF-κB activity and T-cell activation. Cell death & disease, 5(8), e1399. https://doi.org/10.1038/cddis.2014.366
- 23. Yang, P., Lu, Y., Li, M., Zhang, K., Li, C., Chen, H., Tao, D., Zhang, S., & Ma, Y. (2014). Identification of RNF114 as a novel positive regulatory protein for T cell activation. Immunobiology, 219(6), 432–439. https://doi.org/10.1016/j.imbio.2014.02.002
- 24. Liu, Q., Cui, F., Wang, M., Xiong, H., Peng, X., Liang, L., Li, L., Zhang, J., Peng, X., & Zeng, K. (2018). Increased expression of microRNA-338-3p contributes to production of Dsg3 antibody in pemphigus vulgaris patients. Molecular medicine reports, 18(1), 550–556. https://doi.org/10.3892/mmr.2018.8934
- 25. Satyam A., Khandpur S., Sharma V.K., Sharma A. Involvement of T(H)1/T(H)2 cytokines in the pathogenesis of autoimmune skin disease-Pemphigus vulgaris // Immunol Invest. 2009. Vol. 38, N 6. Р. 498–509. doi: 10.1080/08820130902943097
- 26. Lee S.H., Hong W.J., Kim S.C. Analysis of serum cytokine profile in pemphigus // Ann Dermatol. 2017. Vol. 29, N 4. Р. 438–445. doi: 10.5021/ad.2017.29.4.438
- 27. Rizzo, C., Fotino, M., Zhang, Y., et al. Direct characterization of human T cells in pemphigus vulgaris reveals elevated auto- antigen-specific Th2 activity in association with active disease // Clin Experimental Dermatol. 2005. Vol. 30, N 5. Р. 535–540. doi: 10.1111/j.1365-2230.2005.01836.x
- 28. Теплюк, Н. П., Мак, Д. В., Колесова, Ю. В., Лепехова, А. А., Федотчева, Т. А., и Ульченко, Д. Н. (2024). Оценка уровня экспрессии miR-338-3p в диагностике аутоиммунной пузырчатки. Российский журнал кожных и венерических болезней, 27(4), 448-462. doi: 10.17816/dv633413
- 29. Li X, Ishii N, Ohata C, Furumura M, Hashimoto T. Signalling pathways in pemphigus vulgaris. Exp Dermatol. 2014;23(3):155-156. doi: 10.1111/exd.12317
- 30. Chernyavsky AI, Arredondo J, Kitajima Y, Sato-Nagai M, Grando SA. Desmoglein versus non-desmoglein signaling in pemphigus acantholysis: characterization of novel signaling pathways downstream of pemphigus vulgaris antigens. J Biol Chem. 2007;282:13804–13812. doi: 10.1074/jbc.M611365200.
- 31. Berkowitz P, Hu P, Liu Z, Diaz LA, Enghild JJ, Chua MP, Rubenstein DS. Desmosome signaling. Inhibition of p38MAPK prevents pemphigus vulgaris IgG-induced cytoskeleton reorganization. J Biol Chem. 2005;280:23778–23784. doi: 10.1074/jbc.M501365200.
- 32. He W, Xing Y, Li C, et al. Identification of Six microRNAs as Potential Biomarkers for Pemphigus Vulgaris: From Diagnosis to Pathogenesis. Diagnostics (Basel). 2022;12(12):3058. Published 2022 Dec 6. doi: 10.3390/diagnostics12123058
- 33. Livak KJ, Schmittgen TD. Analysis of relative gene expression data using real-time quantitative PCR and the 2(-Delta Delta C(T)) Method. Methods. 2001;25(4):402-408. doi: 10.1006/meth.2001.1262
- 34. Zhang Y, Wang Z, Gemeinhart RA. Progress in microRNA delivery. J Control Release. 2013;172(3):962-974. doi: 10.1016/j.jconrel.2013.09.015
- 35. Slack FJ, Chinnaiyan AM. The Role of Non-coding RNAs in Oncology. Cell. 2019;179(5):1033-1055. doi: 10.1016/j.cell.2019.10.017
- 36. Pozniak T, Shcharbin D, Bryszewska M. Circulating microRNAs in Medicine. Int J Mol Sci. 2022;23(7):3996. Published 2022 Apr 3. doi: 10.3390/ijms23073996
- 37. Zhang, Q., Cannavicci, A., Dai, S.-C., Wang, C., & Kutryk, M. J. B. (2019). MicroRNA signature of human blood mononuclear cells. Molecular and Cellular Biochemistry. doi: 10.1007/s11010-019-03619-3
- 38. Papara C, Zillikens D, Sadik CD, Baican A. MicroRNAs in pemphigus and pemphigoid diseases. Autoimmun Rev. 2021;20(7):102852. doi: 10.1016/j.autrev.2021.102852
Дополнительные файлы
