Молекулярная идентификация видов рода Plenodomus в образцах растений семейства Brassicaceae, хранящихся в Микологическом Гербарии LEP

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

Микологические гербарии представляют собой уникальные и незаменимые биоресурсные коллекции, играющие ключевую роль в исследовании биоразнообразия грибов. Одним из крупнейших является гербарий Всероссийского научно-исследовательского института защиты растений (ВИЗР, LEP). В гербарии хранится самая большая в России коллекция микроскопических фитопатогенных грибов. В процессе многолетнего хранения некоторые из образцов утрачивают свои первоначальные свойства и не могут быть использованы для традиционных морфологических исследований. В настоящее время для изучения гербарных коллекций активно применяют молекулярно-генетические методы, что открывает новые возможности для анализа и сохранения биоразнообразия фитопатогенных микромицетов. Фомоз – одно из самых распространенных заболеваний крестоцветных культур. Возбудителями заболевания являются близкородственные грибы Plenodomus lingam и P. biglobosus. Внутри этих видов выделяют соответственно две и семь филогенетических линий (субклад). Корректная идентификация этих субклад возможна только в результате мультилокусного филогенетического анализа нуклеотидных последовательностей ITS локуса и участков генов, ответственных за синтез актина (act) и β-тубулина (tub2). Целью исследования было проведение реидентификации видов Plenodomus в образцах крестоцветных растений, хранящихся в Микологическом гербарии LEP в течение 60–145 лет с применением методов молекулярной филогении. В ДНК из 16 образцов были определены нуклеотидные последовательности ITS-локуса. Согласно результатам филогенетического анализа, основанного на последовательностях ITS, только в четырех образцах возбудителем фомоза являлись виды Plenodomus. В этих четырех образцах помимо нуклеотидных последовательностей ITS-локуса были успешно определены участки act и tub2. На филогенетическом дереве, построенном на основании нуклеотидных последовательностей всех трех локусов ДНК, образцы вошли в состав клады, сформированной репрезентативными штаммами P. lingam субклады ‘brassicae’. Таким образом, было достоверно установлено, что в четырех образцах возбудителем фомоза являлся вид P. lingam ‘brassicae’. Известно, что на территории России достоверно выявлены P. lingam ‘brassicae’ в Калининградской и Ленинградской областях, P. biglobosus ‘brassicae’ в Калининградской, Ленинградской областях, республике Адыгея и в Краснодарском крае. В результате проведенного исследования наличие гриба P. lingam ‘brassicae’ было подтверждено в гербарных образцах, собранных в Ленинградской и Ростовской областях и в Казахстане. На настоящий момент самая ранняя достоверная находка P. lingam в России имеет возраст 114 лет.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

М. М. Гомжина

Всероссийский НИИ защиты растений

Автор, ответственный за переписку.
Email: gomzhina91@mail.ru
Россия, Санкт-Петербург

Е. Л. Гасич

Всероссийский НИИ защиты растений

Email: elena_gasich@mail.ru
Россия, Санкт-Петербург

Список литературы

  1. Dilmaghani A., Balesdent M.H., Didier J. et al. The Leptosphaeria maculans – Leptosphaeria biglobosa species complex in the American continent. Plant Pathol. 2009. V. 58. P. 1044–1058. https://doi.org/10.1111/j.1365-3059.2009.02149.x
  2. Dilmaghani A., Balesdent M.H., Rouxel T. et al. First report of Leptosphaeria biglobosa (blackleg) on Brassica oleracea (cabbage) in Mexico. Plant Dis. 2010. V. 94. P. 791. https://doi.org/10.1094/pdis-94-6-0791c
  3. Doyle J.J., Doyle J.L. Isolation of plant DNA from fresh tissue. Focus. 1990. V. 12. P. 13–15. https://doi.org/10.1007/978-3-642-83962-7_18
  4. Fitt B.D.L., Brun H., Barbetti M.J. et al. World-wide importance of Phoma stem canker (Leptosphaeria maculans and L. biglobosa) on oilseed rape (Brassica napus). Eur. J. Plant Pathol. 2006. V. 114. P. 3–15. https://doi.org/10.1007/s10658-005-2233-5
  5. Fitt B.D.L., Hu B.C., Li Z.Q. et al. Strategies to prevent spread of Leptosphaeria maculans (Phoma stem canker) onto oilseed rape crops in China; costs and benefits. Plant Pathol. 2008. V. 57. P. 652–664. https://doi.org/10.1111/j.1365-3059.2008.01841.x
  6. Gomzhina M.M., Gannibal Ph.B. Phoma-like fungi in the Mycological Herbarium of All-Russian institute of plant protection (LEP). Mikologiya i fitopatologiya. 2020. V. 54 (6). P. 452–459. https://doi.org/10.31857/S0026364820060070
  7. Gomzhina M.M., Gasich E.L. Plenodomus species infecting oilseed rape in Russia. Plant Protection News. 2022. V. 105(3). P. 135–147. https://doi.org/10.31993/2308-6459-2022-105-3-15425
  8. Henderson M.P. The black-leg disease of cabbage caused by Phoma lingam (Tode) Desmaz. Phytopathology. 1918. V. 8. P. 379–431.
  9. King K.M., West J.S. Detection of the Phoma pathogens Plenodomus biglobosus subclades ‘brassicae’ and ‘canadensis’ on wasabi, and ‘canadensis’ in Europe. Eur. J. Plant Pathol. 2022. V. 162. P. 751–756. https://doi.org/10.1007/s10658-021-02428-z
  10. Kumar S., Stecher G., Li M. et al. MEGA X: molecular evolutionary genetics analysis across computing platforms. Mol Biol Evol. 2018. V. 35. P. 1547–1549. https://doi.org/10.1093/molbev/msy096
  11. Liu Z., Latunde-Dada A.O., Hall A.M. et al. Phoma stem canker disease on oilseed rape (Brassica napus) in China is caused by Leptosphaeria biglobosa ‘brassicae.’ Eur. J. Plant Pathol. 2014. V. 140. P. 841–857. https://doi.org/10.1007/s10658-014-0513-7
  12. Lord E., Leclercq M., Boc A. et al. Armadillo 1.1: An original workflow platform for designing and conducting phylogenetic analysis and simulations. PLOS One. 2012. V. 7 (1). P. e29903. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0029903
  13. Luo T., Li G., Yang L. First report of Leptosphaeria biglobosa ‘canadensis’ causing blackleg on oilseed rape (Brassica napus) in China. Plant Dis. 2021. V. 105 (11). P. 3760. https://doi.org/10.1094/PDIS-12-20-2735-PDN
  14. Mendes-Pereira E., Balesdent M.H., Brun H. et al. Molecular phylogeny of the Leptosphaeria maculans – L. biglobosa species complex. Mycol Res. 2003. V. 107. P. 1287–1304. https://doi.org/10.1017/S0953756203008554
  15. Minh B.Q., Schmidt H.A., Chernomor O. et al. IQ-TREE2: New models and efficient methods for phylogenetic inference in the genomic era. Mol. Biol. Evol. 2020. V. 35 (7). P. 1530–1534. https://doi.org/10.1093/molbev/msaa015
  16. Plummer K.M., Dunse K., Howlett B.J. Non-aggressive strains of the blackleg fungus, Leptosphaeria maculans, are present in Australia and can be distinguished from aggressive strains by molecular analysis. Aust J Bot. 1994. V. 42. P. 1–8. https://doi.org/10.1071/BT9940001
  17. Thompson J.D., Gibson T.J., Plewniak F. et al. The ClustalX windows interface: flexible strategies for multiple sequence alignment aided by quality analysis tools. Nucleic Acids Res. 1997. V. 24. P. 4876–4882. https://doi.org/10.1093/nar/25.24.4876
  18. van de Wouw A.P., Thomas V.L., Cozijnsen A.J. et al. Identification of Leptosphaeria biglobosa ‘canadensis’ on Brassica juncea stubble from northern New South Wales, Australia. Australas. Plant Dis. Notes. 2008. V. 3. P. 124–128. https://doi.org/10.1007/BF03211265
  19. Vincenot L., Balesdent M.H., Li H. et al. Occurrence of a new subclade of Leptosphaeria biglobosa in Western Australia. Phytopathol. 2008. V. 98. P. 321–329. https://doi.org/10.1094/PHYTO-98-3-0321
  20. Voigt K., Cozijnsen A.J., Kroymann J. et al. Phylogenetic relationships between members of the crucifer pathogenic Leptosphaeria maculans species complex as shown by mating type (MAT1–2), actin, and β-tubulin sequences. Mol Phylogenet Evol. 2005. V. 37 (2). P. 541–557. https://doi.org/10.1016/j.ympev.2005.07.006
  21. West J.S., Kharbanda P.D., Barbetti M.J. Epidemiology and management of Leptosphaeria maculans (Phoma stem canker) on oilseed rape in Australia, Canada and Europe. Plant Pathol. 2001. V. 50. P. 10–27. https://doi.org/10.1046/j.1365-3059.2001.00546.x
  22. Zou Z., Zhang X., Parks P. et al. A new subclade of Leptosphaeria biglobosa identified from Brassica rapa. Int. J. Mol. Sci. 2019. V. 20 (7). P. 1668. https://doi.org/10.3390/ijms20071668
  23. Гомжина М.М., Ганнибал Ф.Б. (Gomzhina, Gannibal) Фомоидные грибы на растениях семейства Asteraceae в Микологическом Гербарии ВИЗР LEP // Микология и фитопатология. 2020. Т. 54. № 6. С. 452–459.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
2. Рис. 1. Образец LEP 129983.

Скачать (193KB)
3. Рис. 2. Образец LEP 129979.

Скачать (223KB)
4. Рис. 3. Образец LEP 130090.

Скачать (287KB)
5. Рис. 4. Образец LEP 129332.

Скачать (295KB)
6. Рис. 5. Комбинированное филогенетическое дерево видов и субклад Plenodomus, построенное методом ML, основанное на нуклеотидных последовательностях ITS, act, и tub2. Числовые значения бутстреп-поддержки, полученные методами ML (≥70), MP (≥70) и Байесовской статистики (≥0.7), приведены в узлах ветвей филограммы соответственно. В качестве внешней группы взяты последовательности штамма Leptosphaeria doliolum CBS130000. Номера исследованных образцов выделены синим шрифтом.

Скачать (242KB)

© Российская академия наук, 2025