Russian Journal of ZoologyRussian Journal of ZoologyЗоологический журнал0044-51343034-5456The Russian Academy of Sciences70043910.7868/S3034543X25110085ARTICLESСтатьиResearch ArticleGENETIC VARIABILITY AND SUBSPECIFIC DIFFERENTIATION OF THE STEPPE LEMMING (LAGURUS LAGURUS PALL., CRICETIDAE, RODENTIA), BASED ON AN ANALYSIS OF VARIATIONS IN THE MITOCHONDRIAL CYTOCHROME b GENEГЕНЕТИЧЕСКАЯ ИЗМЕНЧИВОСТЬ И ПОДВИДОВАЯ ДИФФЕРЕНЦИАЦИЯ СТЕПНОЙ ПЕСТРУШКИ (LAGURUS LAGURUS PALL., CRICETIDAE, RODENTIA) НА ОСНОВЕ АНАЛИЗА ВАРИАЦИЙ МИТОХОНДРИАЛЬНОГО ГЕНА ЦИТОХРОМА bDupalT. AДупалТ. Аgf@eco.nsc.ruMoroldoevI. VМоролдоевИ. В-KrivopalovA. VКривопаловА. В-Institute of the Systematics and Ecology of Animals, Siberian Branch, Russian Academy of SciencesИнститут систематики и экологии животных СО РАН1511202510411VOL 104, NO11 (2025)ТОМ 104, №11 (2025)9810508012026Copyright ©; 2025, Russian Academy of SciencesCopyright ©; 2025, Российская академия наук2025Russian Academy of SciencesРоссийская академия наукhttps://rjsvd.com/0044-5134/article/view/700439

A phylogeographic analysis of the Steppe lemming, Lagurus lagurus, was performed using molecular genetic data obtained from the original collection and those deposited in the NCBI database. The nucleotide sequences of the cytb gene were analyzed. The level of genetic variability and differentiation of the species across the distribution range was found to be relatively low. All cytb sequences were divided into three haplogroups corresponding to the subspecies lagurus, aliorum and abacanicus. The highest level of genetic polymorphism for this marker was found in the subspecies abacanicus. The low genetic differentiation of the subspecies agressus seems to indicate a relatively recent colonization of the northwestern part of the range by the Steppe lemming.

На основе молекулярно-генетических данных, полученных из оригинальной коллекции и депонированных в базе данных NCBI, был проведен филогеографический анализ степной пеструшки (Lagurus lagurus). Проанализированы нуклеотидные последовательности гена cytb. Установлено, что уровень генетической изменчивости и дифференциации вида по ареалу относительно низкий. Все последовательности cytb разделены на три галлогруппы, соответствующие подвидам lagurus, aliorum и abacanicus. Наибольший уровень генетического полиморфизма по данному маркеру выявлен у подвида abacanicus. Низкая генетическая дифференциация подвида agressus указывает на относительно недавнее заселение степной пеструшкой северо-западной части ареала.

cytbmolecular genetic variabilityphylogeographysubspecies taxonomyLagurus lagurusdistribution rangeisolationcytbмолекулярно-генетическая изменчивостьфилогеографияподвидовая систематикаLagurus lagurusареализоляцияИсследование выполнено в рамках Государственного задания ИСиЭЖ СО РАН на 2021–2025 гг., проект FWGS-2021-0002.Банников А.Г., 1954. Млекопитающие Монгольской Народной Республики. М.: Изд-во АН СССР. 669 с.Банникова А.А., 2004. Молекулярные маркеры и современная филогенетика млекопитающих // Журнал общей биологии. Т. 65. № 4. С. 278–305.Блехман А.В., Головчан Н.Н., Ондар С.О., Брандлер О.В., 2025. Генетическая изменчивость монгольской песчанки Meriones unguiculatus в северо-­западной части ареала // Генетика. Т. 61. № 5. С. 96–102.Громов И.М., Ербаева М.А., 1995. Млекопитающие фауны России и сопредельных территорий. Зайцеобразные и грызуны. СПб. Зоол. ин-т. 520 с.Громов И.М., Поляков И.Я., 1977. Полевки (Microtinae). Фауна СССР. Млекопитающие / Под ред. Скарлато О.А. Л.: Наука. Т. 3. 504 с.Дупал Т.А., Андренко О.В., Виноградов В.В., 2013. Млекопитающие перигляциальной гиперзоны конца плейстоцена и становление современной фауны грызунов гор Западной и Средней Сибири // Сибирский экологический журнал. Т. XX. № 1. С. 123–134.Дупал Т.А., Абрамов С.А., Литвинов Ю.Н., 2022. Морфологическая изменчивость степной пеструшки (Lаgurus lagurus Pall.) на северо-­востоке ареала // Известия РАН, Серия биологическая. № 6. С. 614–625.Зажигин В.С., 1980. Грызуны позднего плиоцена и антропогена юга Западной Сибири. Труды ГИН. Вып. 339. М.: Наука. 156 с.Лебедев В.Л., Косушкин С.А., Банникова А.А., 2024. Генетическая концепция вида в приложении к мультилокусным ядерным данным // Журнал общей биологии. Т. 85. № 4. С. 269–283.Маркова А.К., 2004. Плейстоценовые фауны млекопитающих Восточной Европы // География, общество, окружающая среда. Т. 1. Структура, динамика и эволюция природных геосистем. М.: Городец. С. 583–598.Маркова А.К., Т. ван Кольфсхотен, Бохнкке Ш., Косинцев П.А., Мол И., Пузаченко А.Ю., Симакова А.Н., Смирнов Н.Г., Верпоорте А., Головачев И.Б., 2008. Эволюция экосистем Европы при переходе от плейстоцена к голоцену (24–8 тыс.л.н.) / Отв.ред. А.К. Маркова, Т. ван Кольфсхотен. М.: Товарищество научных изданий КМК. 556 с.Млекопитающие Казахстана. В 4 х томах. Т. 1. Ч. 3, 1978. Алма-­Ата: Наука КазССР. 492 с.Огнев С.И., 1950. Звери СССР и прилежащих стран (звери Восточной Европы и Северной Азии). М.-Л.: Изд-во АН СССР. Т. 7. 706 с.Павлинов И.Я., 2019. Звери России. Справочник-­определитель. Ч. 1. Насекомоядные, Рукокрылые, Зайцеобразные, Грызуны. М.: Товарищество научных изданий КМК. 340 с.Петрова Т.В., 2016. Узкочерепная полевка Lasiopodomys (Stenocranius) gregalis (Pallas, 1779): таксономическая структура, положение в системе и эволюция. Автореф. дис. … канд. биол. наук. Санкт-­Петербург: ЗИН РАН. 25 с.Чертилина О.В., Симонов Е.П., Лопатина Н.В., Литвинов Ю.Н., 2012. Генетическое разнообразие плоскочерепной полевки (Alticola strelzowi (Kastschenko, 1899)) по данным об изменчивости гена цитохрома b // Генетика. Т. 48. № 3. С. 352–360.Шереметьевa И.Н., Картавцева И.В., Фрисман Л.В., Васильева Т.В., Аднагулова А.В., 2015. Полиморфизм и генетическая структура полевки Максимовича Microtus maximowiczii (Schrenck, 1858) (Rodentia, Cricetidae) среднего Приамурья по данным секвенирования контрольного региона мтДНК // Генетика. Т. 51. № 10. С. 1154–1162.Шереметьевa И.Н., Картавцева И.В., Павленко М.В., Моролдоев И.В., Баженов Ю.А., Голенищев Ф.Н., 2022. Формирование генетической структуры популяций дальневосточной полевки (Alexandromys fortis, Rodentia, Arvicolinae) на северной периферии ареала // Зоологический журнал. Т. 101. № 10. С. 1173–1189.Abramson N.I., Bodrov S.Y., Bondareva O.V., Genelt-­Yanovskiy E.A., Petrova T.V., 2021. A mitochondrial genome phylogeny of voles and lemmings (Rodentia: Arvicolinae): Evolu-tionary and taxonomic implications // PLoS ONE. 16(11): e0248198. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0248198Bandelt H., Forster P., Röhl A., 1999. Median-­joining networks for inferring intraspecific phylogenies // Mol. Biol. Evol. V. 16. № 1. P. 37–48.Bannikova A., Lebedev V., Lissovskii A. et al., 2010. Molecular phylogeny and evolution of the Asian lineage of vole genus Microtus (Rodentia: Arvicolinae) in-ferred from mitochondrial cytochrome b sequence // Biol. J. Linnean Society. № 99. P. 595–613.Bannikova A.A., Lebedev V.S., Poplavskaya N.S., Simanovsky S.A., Undrakhbayar E., Adiya Y., Surov A.S., 2019. Phylogeny and phylogeography of arvicoline and lagurine voles of Mongolia // Folia Zool. Т. 68 (2). P. 100–113.Irwin D.M., Kocher T.D., Wilson A.C., 1991. Evolution of the cytochrome b gene of mammals // J. Mol. Evol. V. 32. № 2. P. 128–144.Krystufek B., Shenbrot G.I., 2022. Voles and Lemmings (Arvicolinae) of the Palaearctic Region. Slovenia, University of Maribor, University Press. 427 p.Leigh J.W., Bryant D., 2015. PopART: Full-feature software for haplotype network construction // Methods Ecol. Evol. V. 6. № 9. P. 1110–1116.Ohdachi S.D., Dokuchaev N.E., Hasegawa M., Masuda R., 2001. Intraspecific phylogeny and geographical variation of six species of northeastern Asiatic Sorex shrews based on the mitochondrial cytochrome b sequences // Molecular Ecology. № 10. P. 2199–2213.Petrova T.V., Zakharov E.S., Samiya R., Abramson N.I., 2015. Phylogeography of the narrow-­headed vole Lasiopodomys (Stenocranius) gregalis (Cricetidae, Rodentia) inferred mitochondrial cytochrome b sequences: an echo Pleistocene prosperity // J. of Zoological Systematics and Evolutionary Research. V. 53. № 2. P. 97–108.Petrova T.V., Kuksin F.N., Putintsev N.I., Lopatina N.V., Lissovsky A.A., 2023. Phylogeography of Lasiopodomys gregalis (Rodentia, Cricetidae) in the southern part of its geographic range // Russian J. Theriol. V. 22. № 2. P. 102–119.Rozas J., Ferrer-­Mata A., Sánchez-­DelBarrio J.C., Guirao-­Rico S., Librado P., Ramos-­Onsins S.E., Sánchez-­Gracia A., 2017. DnaSP 6: DNA Sequence Polymor-­phism Analysis of Large Datasets // Mol. Biol. Evol. № 34. Р. 3299–3302.Sayers E.W., Cavanaugh M., Clark K., Pruitt K.D., Schoch C.L., Sherry S.T., Karsch-­Mizrachi I., 2022. GenBank. Nucleic Acids Res. 50 (D1): D13-D19. Available from: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/genbank/Sievers F., Higgins D.G., 2017. Clustal Omega for making accurate alignments of many protein sequences // Protein Science. V. 27. № 1. P. 135–145.Tamura K., Nei M., 1993. Estimation of the number of nucleotide substitutions in the control region of mitochondrial DNA in humans and chimpanzees // Mol. Biol. Evol. V. 10. № 3. P. 512–526.Tamura K., Stecher G., Kumar S., 2021. MEGA11: Molecular Evolutionary Genetics Analysis Version 11 // Mol. Biol. Evol. V. 38. № 7. Р. 3022–3027.