Антибиотические свойства низина в контексте его применения в качестве пищевой добавки
- Авторы: Багрянцева О.В.1,2, Хотимченко С.А.1,2, Петренко А.С.3, Шевелева С.А.1, Арнаутов О.В.4, Елизарова Е.В.2
-
Учреждения:
- ФГБУН «Федеральный исследовательский центр питания, биотехнологии и безопасности пищи»
- ФГАОУ ВО «Первый московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова Министерства здравоохранения Российской Федерации (Сеченовский университет)»
- EAS Strategies
- Евразийская экономическая комиссия
- Выпуск: Том 99, № 7 (2020)
- Страницы: 704-711
- Раздел: ГИГИЕНА ПИТАНИЯ
- Статья опубликована: 08.09.2020
- URL: https://rjsvd.com/0016-9900/article/view/639712
- DOI: https://doi.org/10.47470/0016-9900-2020-99-7-704-711
- ID: 639712
Цитировать
Полный текст
Аннотация
Введение. Известно, что микробные патогены могут вырабатывать резистентность к множественным антибактериальным препаратам. Пищевые добавки, в частности консерванты, также могут способствовать повышению устойчивости микроорганизмов - загрязнителей пищевых продуктов к противомикробным препаратам. В данной статье показано, что лантибиотик низин проявляет все свойства, характерные для антибиотиков, а именно: способствует развитию антибиотикорезистентности патогенных и условно патогенных микроорганизмов, снижению иммунного статуса организма, развитию дисбаланса микробиоценоза кишечника, оказывает влияние на обмен веществ организма посредством регуляции транскрипции ДНК.
Цель - оценить риски применения низина (Е234) с учётом его влияния на биологические свойства микроорганизмов - загрязнителей пищевой продукции.
Материал и методы. Расчёт потребления низина с пищей в соответствии с условиями сценариев 1 и 2 проводили с учётом массы тела потребителей различных возрастных групп населения России в программе Excel. Проведён анализ научных данных о биологических свойствах низина, в том числе о способности формировать к нему резистентность микроорганизмов.
Результаты и заключение. Впервые показано, что расчётные количества пищевой добавки-консерванта низина (Е234) в кишечном содержимом превышают его минимальные ингибирующие концентрации для представителей нормофлоры ЖКТ человека у населения всех возрастов от 40 до 27 064 раз, в зависимости от сценария потребления (при минимальном и максимальном уровнях воздействия). Доказано, что безопасность низина, используемого в качестве пищевой добавки, нуждается в переоценке с учётом его значительного вклада в устойчивость к противомикробным препаратам пищевых патогенов.
Об авторах
Ольга Викторовна Багрянцева
ФГБУН «Федеральный исследовательский центр питания, биотехнологии и безопасности пищи»; ФГАОУ ВО «Первый московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова Министерства здравоохранения Российской Федерации (Сеченовский университет)»
Автор, ответственный за переписку.
Email: bagryantseva@ion.ru
ORCID iD: 0000-0003-3174-2675
Доктор биол. наук, вед. науч. сотр. лаб. пищевой токсикологии и оценки безопасности нанотехнологий ФГБУН «ФИЦ питания и биотехнологии», проф. кафедры гигиены питания и токсикологии ИПО ФГАОУ ВО «Первый Московский государственный
медицинский университет им. И.М. Сеченова» МЗ РФ, 119991, Москва. Россия
С. А. Хотимченко
ФГБУН «Федеральный исследовательский центр питания, биотехнологии и безопасности пищи»; ФГАОУ ВО «Первый московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова Министерства здравоохранения Российской Федерации (Сеченовский университет)»
Email: noemail@neicon.ru
ORCID iD: 0000-0002-5340-9649
Россия
А. С. Петренко
EAS Strategies
Email: noemail@neicon.ru
ORCID iD: 0000-0002-6461-0196
Россия
С. А. Шевелева
ФГБУН «Федеральный исследовательский центр питания, биотехнологии и безопасности пищи»
Email: noemail@neicon.ru
ORCID iD: 0000-0001-5647-9709
Россия
О. В. Арнаутов
Евразийская экономическая комиссия
Email: noemail@neicon.ru
ORCID iD: 0000-0003-3309-0308
Россия
Е. В. Елизарова
ФГАОУ ВО «Первый московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова Министерства здравоохранения Российской Федерации (Сеченовский университет)»
Email: noemail@neicon.ru
ORCID iD: 0000-0001-5300-8688
Россия
Список литературы
- Roca I., Akova M., Baquero F., Carlet J., Cavaleri M., Coenen S. et al. The global threat of antimicrobial resistance: science for intervention. New Microbes New Infect. 2015; 6: 22–9. https://doi.org/10.1016/j.nmni.2015.02.007
- Hiltunen T., Virta M., Laine A.L. Antibiotic resistance in the wild: an eco-evolutionary perspective. Philos Trans R Soc Lond B Biol Sci. 2017; 372(1712): 20160039. https://doi.org/10.1098/rstb.2016.0039
- Romero D., Traxler M.F., López D., Kolter R. Antibiotics as signal molecules. Chem Rev. 2011; 111(9): 5492-505. https://doi.org/10.1021/cr2000509
- Шевелёва С.А. Антибиотикоустойчивые микроорганизмы в пище как гигиеническая проблема (обзорная статья). Гигиена и санитария. 2018; 97(4): 342–54. https://doi.org/10.18821/0016-9900-2018-97-4-342-354
- Draper L.A., Cotter P.D., Hill C., Ross R.P. Lantibiotic resistance. Microbiol Mol Biol Rev. 2015; 79(2): 171–91. https://doi.org/10.1128/mmbr.00051-14
- Nhung N.T., Van N.T.B., Cuong N.V., Duong T.T.Q., Nhat T.T., Hang T.T.T. et al. Antimicrobial residues and resistance against critically important antimicrobials in non-typhoidal salmonella from meat sold at wet markets and supermarkets in Vietnam. Int J Food Microbiol. 2018; 266: 301–9. https://doi.org/10.1016/j.ijfoodmicro.2017.12.015
- WHO. Antimicrobial Resistance: Global Report on Surveillance; 2014. Available at: http://www.who.int/news-room/fact-sheets/detail/antimicrobial-resistance
- Mazzotta A.S., Montville T.J. Characterization of fatty acid composition, spore germination, and thermal resistance in a nisin-resistant mutant of Clostridium botulinum 169b and in the wild-type strain. Appl Environ Microbiol. 1999; 65(2): 659–64.
- Collins B., Guinane C.M., Cotter P.D., Hill C., Ross R.P. Assessing the contributions of the LiaS histidine kinase to the innate resistance of Listeria monocytogenes to nisin, cephalosporins, and disinfectants. Appl Environ Microbiol. 2012; 78(8): 2923–9. https://doi.org/10.1128/aem.07402-11
- Bergholz T.M., Tang S., Wiedmann M., Boor K.J. Nisin resistance of Listeria monocytogenes is increased by exposure to salt stress and is mediated via LiaR. Appl Environ Microbiol. 2013; 79(18): 5682–8. https://doi.org/10.1128/aem.01797-13
- Campion A., Casey P.G., Field D., Cotter P.D., Hill C., Ross R.P. In vivo activity of nisin A and nisin V against Listeria monocytogenes in mice. BMC Microbiol. 2013; 13: 23. https://doi.org/10.1186/1471-2180-13-23
- Pushpanathan M., Gunasekaran P., Rajendhran J. Antimicrobial peptides: versatile biological properties. Int J Pept. 2013; 2013: 675391. https://doi.org/10.1155/2013/675391
- Kruszewska D., Sahl H.G., Bierbaum G., Pag U., Hynes S.O., Ljungh A. Mersacidin eradicates methicillin-resistant Staphylococcus aureus (MRSA) in a mouse rhinitis model. J Antimicrob Chemother. 2004; 54(3): 648–53. https://doi.org/10.1093/jac/dkh387
- Bechinger B., Gorr S.U. Antimicrobial peptides: mechanisms of action and resistance. J Dent Res. 2017; 96(3): 254–60. https://doi.org/10.1177/0022034516679973
- Tong Z., Zhang Y., Ling J., Ma J., Huang L., Zhang L. An in vitro study on the effects of nisin on the antibacterial activities of 18 antibiotics against Enterococcus faecalis. PLoS One. 2014; 9(2): e89209. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0089209
- Nawrocki K., Crispell E., McBride S. Antimicrobial peptide resistance mechanisms of gram-positive bacteria. Antibiotics. 2014; 3(4): 461–92. https://doi.org/10.3390/antibiotics3040461
- Mathur H., Field D., Rea M.C., Cotter P.D., Hill C., Ross R.P. Bacteriocin-antimicrobial synergy: a medical and food perspective. Front Microbiol. 2017; 8: 1205. https://doi.org/10.3389/fmicb.2017.01205
- Mathur H., Field D., Rea Mary C., Cotter P.D., Hill C., Ross R.P. Fighting biofilms with lantibiotics and other groups of bacteriocins. NPJ Biofilms Microbiomes. 2018; 4: 9. https://doi.org/10.1038/s41522-018-0053-6
- Food Consumption. All Households, Kg/Year/Person 2014. Available at: http://www.gks.ru/search?q=потребление+пищевых+продуктов
- Combined Compendium of Food Additive Specification. Available at: http://www.fao.org/fileadmin/user_upload/jecfa_additives/docs/monograph14/additive-295-m14.pdf
- Hurst A. Nisin. Adv Appl Microbiol. 1981; 27: 85–123. https://doi.org/10.1016/s0065-2164(08)70342-3
- Технический регламент Таможенного союза 029/2012. Требования безопасности пищевых добавок, ароматизаторов и технологических вспомогательных средств.
- Nisin. In: World Health Organization. Evaluation of Certain Food Additives and Contaminants: Seventy-Seventh Report of the Joint Fao/Who Expert Committee on Food Additives. Technical Report Series. Malta; 2013.
- European Food Safety Authority (EFSA). Opinion of the scientific panel on food additives, flavourings, processing aids and materials in contact with food (AFC) related to the safety in use of nisin as a food additive in an additional category of liquid eggs. EFSA J. 2006; 4(12): 314b. https://doi.org/10.2903/j.efsa.2006.314b
- Younes M., Aggett P., Aguilar F., Crebelli R., Dusemund B., Filipi M. et al. Safety of nisin (E 234) as a food additive in the light of new toxicological data and the proposed extension of use. EFSA J. 2017; 15(12): e05063. https://doi.org/10.2903/j.efsa.2017.5063
- Severina E., Severin A., Tomasz A. Antibacterial efficacy of nisin against multidrug-resistant Gram-positive pathogens. J Antimicrob Chemother. 1998; 41(3): 341–7. https://doi.org/10.1093/jac/41.3.341
- Malanovic N., Lohner K. Antimicrobial peptides targeting gram-positive bacteria. Pharmaceuticals (Basel). 2016; 9(3): 59. https://doi.org/10.3390/ph9030059
- Kingston A.W., Liao X., Helmann J.D. Contributions of the σ(W), σ(M) and σ(X) regulons to the lantibiotic resistome of Bacillus subtilis. Mol Microbiol. 2013; 90(3): 502–18. https://doi.org/10.1111/mmi.12380
- Sun Z., Li P., Liu F., Bian H., Wang D., Wang X. et al. Synergistic antibacterial mechanism of the Lactobacillus crispatus surface layer protein and nisin on Staphylococcus saprophyticus. Sci Rep. 2017; 7(1): 265. https://doi.org/10.1038/s41598-017-00303
- Sun Z., Zhong J., Liang X., Liu J., Chen X., Huan L. Novel mechanism for nisin resistance via proteolytic degradation of nisin by the nisin resistance protein NSR. Antimicrob Agents Chemother. 2009; 53(5): 1964–73. https://doi.org/10.1128/aac.01382-08
- Dielbandhoesing S.K., Zhang H., Caro L.H., van der Vaart J.M., Klis F.M., Verrips C.T. et al. Specific cell wall proteins confer resistance to nisin upon yeast cells. Appl Environ Microbiol. 1998; 64(10): 4047–52.
- Biswaro L.S., da Costa Sousa M.G., Rezende T.M.B., Dias S.C., Franco O.L. Antimicrobial peptides and nanotechnology, recent advances and challenges. Front Microbiol. 2018; 9: 855. https://doi.org/10.3389/fmicb.2018.00855
- Joo N.E., Ritchie K., Kamarajan P., Miao D., Kapila Y.L. Nisin, an apoptogenic bacteriocin and food preservative, attenuates HNSCC tumorigenesis via CHAC1. Cancer Med. 2012; 1(3): 295–305. https://doi.org/10.1002/cam4.35
- Zainodini N., Hassanshahi G., Hajizadeh M., Falahati-Pour S.K., Mahmoodi M., Mirzaei M.R. Nisin induces cytotoxicity and apoptosis in human asterocytoma cell line (SW1088). Asian Pac J Cancer Prev. 2018; 19(8): 2217–22. https://doi.org/10.22034/APJCP.2018.19.8.2217
- Zhang J., Caiyin Q., Feng W., Zhao X., Qiao B., Zhao G., et al. Enhance nisin yield via improving acid-tolerant capability of Lactococcus lactis F44. Sci Rep. 2016; 6: 27973. https://doi.org/10.1038/srep27973
- Zhou L., Wang L., Tian P., Bao T., Li L., Zhao X. The LiaFSR and BsrXRS systems contribute to bile salt resistance in enterococcus faecium isolates. Front Microbiol. 2019, 10: 1048. https://doi.org/10.3389/fmicb.2019.01048
- Kaczor A.A., Polski A., Sobotka-Polska K., Pachuta-Stec A., Makarska B.M., Pitucha M. Novel antibacterial compounds and their drug targets – successes and challenges. Curr Med Chem. 2017; 24(18): 1948–82. https://doi.org/10.2174/0929867323666161213102127
- Bengtsson-Palme J., Kristiansson E., Larsson D.G.J. Environmental factors influencing the development and spread of antibiotic resistance. FEMS Microbiol Rev. 2018; 42(1): fux053. https://doi.org/10.1093/femsre/fux053
- Guidelines for Simple Evaluation of Dietary Exposure to Food Additives CXG 3-1989 Available at: http:// http://www.fao.org/fao-who-codexalimentarius/codex-texts/guidelines/en/
- Codex Alimentarius Commission. The General Standard for Food Additives. CODEX Stan 192-1995. Geneva; 1995. Available at: http://www.fao.org/fao-who-codexalimentarius/sh-proxy/en/?lnk=1&url=https%253A%252F%252Fworkspace.fao.org%252Fsites%252Fcodex%252FStandards%252FCXS%2B192-1995%252FCXS_192e.pdf
- WHO. The 47th meeting of the Joint FAO/WHO Expert Committee on Food Additives (JECFA). Toxicological Evaluation of Certain Veterinary Drug Residues in Food. Geneva; 1996. Available at: http://www.who.int/foodsafety/publications/jecfa-reports/en/
- Revilla-Guarinos A., Gebhard S., Alcántara C., Staro A., Mascher T., Zúñiga M. Characterization of a regulatory network of peptide antibiotic detoxification modules in Lactobacillus casei BL23. Appl Environ Microbiol. 2013; 79(10): 3160–70. https://doi.org/10.1128/aem.00178-13
- Józefiak D., Kieroczyk B., Jukiewicz J., Zduczyk Z., Rawski M., Dugosz J. et al. Dietary Dietary nisin modulates the gastrointestinal microbial ecology and enhances growth performance of the broiler chickens. PLoS One. 2013; 8(12): e85347. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0085347
- Kawada-Matsuo M., Yoshida Y., Zendo T., Nagao J., Oogai Y., Nakamura Y. et al. Three distinct two-component systems are involved in resistance to the class I bacteriocins, Nukacin ISK-1 and nisin A, in Staphylococcus aureus. PLoS One. 2013; 8(7): e69455. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0069455
- Zhou H., Fang J., Tian Y., Lu X.Y. Mechanisms of nisin resistance in Gram-positive bacteria. Ann Microbiol. 2013; 64(2): 413–20. https://doi.org/10.1007/s13213-013-0679-9
- Shin J., Gwak J., Kamarajan P., Fenno J., Rickard A., Kapila Y. Biomedical applications of Nisin. J Appl Microbiol. 2016; 120(6): 1449–65. https://doi.org/10.1111/jam.13033
- Roy R., Tiwari M., Donelli G., Tiwari V. Strategies for combating bacterial biofilms: a focus on anti-biofilm agents and their mechanisms of action. Virulence. 2017; 9(1): 522–54. https://doi.org/10.1080/21505594.2017.1313372
- Mantovani H.C., Russell J.B. Nisin resistance of Streptococcus bovis. Appl Environ Microbiol. 2001; 67(2): 808–13. https://doi.org/10.1128/aem.67.2.808-813.2001
- Papadimitriou K., Alegría Á., Bron P.A., de Angelis M., Gobbetti M., Kleerebezem M. et al. Stress physiology of lactic acid bacteria. Microbiol Mol Biol Rev. 2016; 80(3): 837–90. https://doi.org/10.1128/mmbr.00076-15
- Dicks L.M.T., Dreyer L., Smith C., van Staden A.D. A Review: The Fate of Bacteriocins in the Human Gastro-Intestinal Tract: Do They Cross the Gut–Blood Barrier? Front Microbiol. 2018; 9: 2297. https://doi.org/10.3389/fmicb.2018.02297
- Algburi A., Comito N., Kashtanov D., Dicks L.M.T., Chikindas M.L. Control of Biofilm Formation: Antibiotics and Beyond. Appl Environ Microbiol. 2017; 83(3): e02508–16. https://doi.org/10.1128/aem.02508-16
- Repka L.M., Chekan J.R., Nair S.K., van der Donk W.A. Mechanistic understanding of lanthipeptide biosynthetic enzymes. Chem Rev. 2017; 117(8): 5457–520. https://doi.org/10.1021/acs.chemrev.6b00591
- Yang X., Lennard K.R., He C., Walker M.C., Ball A.T., Doigneaux C. et al. A lanthipeptide library used to identify a protein-protein interaction inhibitor. Nat Chem Biol. 2018; 14(4): 375–80. https://doi.org/10.1038/s41589-018-0008-5
- Report of the Forty Eighth Session of the Codex Committee on Food Additives. Codex Alimentarius Commission; 2018.
- Field D., Baghou I., Rea M., Gardiner G., Ross R., Hill C. Nisin in combination with cinnamaldehyde and EDTA to control growth of Escherichia coli strains of swine origin. Antibiotics (Basel). 2017; 6(4): 35. https://doi.org/10.3390/antibiotics6040035
- Field D., Cotter P.D., Ross R.P., Hill C. Bioengineering of the model lantibiotic nisin. Bioengineered. 2015; 6(4): 187–92. https://doi.org/10.1080/21655979.2015.1049781
- Zhao X., Shi C., Meng R., Liu Z., Huang Y., Zhao Z. et al. Effect of nisin and perilla oil combination against Listeria monocytogenes and Staphylococcus aureus in milk. J Food Sci Technol. 2016; 53(6): 2644–53. https://doi.org/10.1007/s13197-016-2236-6
- Nerandzic M.M., Donskey C.J. Activate to eradicate: inhibition of Clostridium difficile spore outgrowth by the synergistic effects of osmotic activation and nisin. PLoS One. 2013; 8(1): e54740. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0054740
- Overbeck T.J., Welker D.L., Hughes J.E., Steele J.L., Broadbent J.R. Transient MutS-based hypermutation system for adaptive evolution of Lactobacillus casei to low pH. Appl Environ Microbiol. 2017; 83(20): e01120–17. https://doi.org/10.1128/aem.01120-17
- Bang C., Vierbuchen T., Gutsmann T., Heine H., Schmitz R.A. Immunogenic properties of the human gut-associated archaeon Methanomassiliicoccus luminyensis and its susceptibility to antimicrobial peptides. PLoS One. 2017; 12(10): e0185919. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0185919
- Hatziioanou D., Gherghisan-Filip C., Saalbach G., Horn N., Wegmann U., Duncan S.H. et al. Discovery of a Novel Lantibiotic Nisin O from Blautia-Obeum A2-162, Isolated from the Human Gastrointestinal Tract. Microbiology. 2017; 163(9): 1292–305. https://doi.org/10.1099/mic.0.000515
- Giardina A., Alduina R., Gallo G., Monciardini P., Sosio M., Puglia A.M. Inorganic phosphate is a trigger factor for Microbispora sp. ATCC-PTA-5024 growth and NAI-107 production. Microb Cell Fact. 2014; 13: 133. https://doi.org/10.1186/s12934-014-0133-0
- Gravesen A., Kallipolitis B., Holmstrøm K., Høiby P.E., Ramnath M., Knøchel S. pbp2229-mediated nisin resistance mechanism in Listeria monocytogenes confers cross-protection to class IIa bacteriocins and affects virulence gene expression. Appl Environ Microbiol. 2004; 70(3): 1669–79. https://doi.org/10.1128/aem.70.3.1669-1679.2004
- Lin L., Zhang J. Role of intestinal microbiota and metabolites on gut homeostasis and human diseases. BMC Immunol. 2017; 18(1): 2.https://doi.org/10.1186/s12865-016-0187-3
- Kindrachuk J., Jenssen H., Elliott M., Nijnik A., Magrangeas-Janot L., Pasupuleti M. et al. Manipulation of innate immunity by a bacterial secreted peptide: lantibiotic nisin Z is selectively immunomodulatory. Innate Immun. 2013; 19(3): 315–27. https://doi.org/10.1177/1753425912461456.3389/fmicb.2018.02297
- Gabrielsen C., Brede D.A., Nes I.F., Diep D.B. Circular bacteriocins: biosynthesis and mode of action. Appl Environ Microbiol. 2014; 80(22): 6854–62. https://doi.org/10.1128/aem.02284-14
- Perez R.H., Zendo T., Sonomoto K. Novel bacteriocins from lactic acid bacteria (LAB): various structures and applications. Microb Cell Fact. 2014; 13(Suppl. 1): S3. https://doi.org/10.1186/1475-2859-13-s1-s3
- Kamarajan P., Hayami T., Matte B., Liu Y., Danciu T., Ramamoorthy A. et al. Nisin ZP, a bacteriocin and food preservative, inhibits head and neck cancer tumorigenesis and prolongs survival. PLoS One. 2015; 10(7): e0131008. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0131008
- Carroll J., Field D., O’Connor P.M., Cotter P.D., Coffey A., Hill C. et al. Gene encoded antimicrobial peptides, a template for the design of novel anti-mycobacterial drugs. Bioeng Bugs. 2010; 1(6): 408–12. https://doi.org/10.4161/bbug.1.6.1364
Дополнительные файлы
